本试剂盒基于固相酶联免疫吸附分析法(Enzyme-linked Immunosorbent Assay,ELISA),采用双抗体夹心的技术原理检测样品中人干扰素-γ的含量。
人干扰素 γ (Human IFN-γ) 检测试剂盒 (酶联免疫吸附法)
96 测试 / 盒
本试剂盒适用于生物制品中人干扰素 -γ 的定量检测,如 CAR-T 细胞效力评价等。
该试剂盒仅供研究使用,不可用于诊断。
本试剂盒基于固相酶联免疫吸附分析法 (Enzyme-linked Immunosorbent Assay, ELISA), 采用双抗体夹心的技术原理检测样品中人干扰素 -γ 的含量。该分析方法通过包被针对人干扰素 -γ 的抗体来捕获样品中的人干扰素 -γ, 接着加入生物素标记的抗人干扰素 -γ 抗体进一步孵育结合,随后加入 HRP (Horseradish Peroxidase, 辣根过氧化物酶) 标记的链霉亲和素,温育后洗涤;加入 TMB (3,3',5,5'- 四甲基联苯胺) 底物反应,HRP 催化 H₂O₂氧化 TMB 生成蓝色产物 (最大吸收峰 655 nm), 随后加入终止液终止酶催化反应,生成黄色产物 (最大吸收峰 450 nm)。酶标仪采集 450 nm 波长下吸光度值,其吸光度与校准品和样品中的人干扰素 -γ 浓度成正相关。通过剂量 - 反应曲线可计算得出样品中人干扰素 -γ 的浓度。
对实际样品无需特殊处理,可通过合适的稀释比例进行适用性验证,以确定本试剂盒是否适用,在合适的稀释比例进行检测。本试剂盒检测快速,专一性强,性能稳定可靠。
备注:下文中 Human IFN- γ 表示人干扰素 -γ。
未开封试剂盒置 2-8 ℃保存,有效期为 12 个月,具体详见试剂盒标签。
开封组分的保存要求如下:
稀释用的无菌离心管
拍干酶标板的吸水纸
加样槽
无菌滤芯吸头
酶标仪 (能够检测 450 nm 吸光度值,如同时能再检测 620-650 nm 区间内任一波长的吸光度值更佳)
单道和多道的微量移液器
微孔板恒温振荡器 (用于样品孵育,若没有配备该设备,可选择静置孵育,具体见操作方法)
恒温培养箱 (25 ℃±3 ℃)
洗板机 (可选)
图2 操作流程示意图
将试剂盒取出,在使用前于室温平衡约 20 分钟。试剂使用后需立即放回 2-8 ℃保存。
根据检测样品数量计算所需孔数,取出相应数量的预包被酶标板条,剩余板条连同干燥剂置于自封袋中密封,放回试剂盒中,保存在 2-8 ℃冰箱,请于效期内使用完。
备:室温指 25 ℃± 3 ℃。
Human IFN-γ 校准品溶解:根据西林瓶标签上的含量标识,务必精确量取校准品复溶液 300 μL 于西林瓶中,轻柔颠倒混匀,静置 5 分钟,得到复溶校准品。
备注:不可用其他体积的复溶液溶解该校准品,根据标签信息计算复溶校准品浓度后进行梯度稀释,复溶后校准品仅限当日使用。
1× 缓冲液配制:浓缩缓冲液 (10×) 用超纯水稀释 10 倍,例如取 25 mL 浓缩缓冲液 (10×) 加入 225 mL 超纯水混匀,即为 1× 缓冲液,用于洗板。建议现配现用。若采用洗板机洗涤,试剂量可能不够,可单独采购相同产品号的缓冲液。
备注:取出浓缩缓冲液 (10×) 和稀释液,观察如有结晶属正常现象,于 37 ℃温育直至完全溶解。
抗体配制:用稀释液于无菌离心管中将生物素偶联 Human IFN-γ 抗体 (100×) 稀释 100 倍,用漩涡振荡器震荡混匀,即为 1× 生物素偶联 Human IFN-γ 抗体溶液。配制合适体积,以保证加液时有充足的余量。
链霉亲和素 HRP 复合物溶液配制:用稀释液将链霉亲和素 HRP 复合物 (100×) 稀释 100 倍,用漩涡振荡器震荡混匀,即为 1× 链霉亲和素 HRP 复合物溶液。配制合适体积,以保证加液时有充足的余量。
校准曲线配制:参照图 3 和表 3 对校准品进行梯度稀释。
图 3 校准品稀释操作示例
表 3 系列校准品梯度稀释
校准曲线样品 | 加样 | 浓度 (pg/mL) |
ST0* | 50 μL 复溶校准品 + 450 μL 稀释液 | / |
ST1 | 将 ST0 用稀释液稀释到 ST1 浓度 | 400 |
ST2 | 500 μL ST1 溶液 + 500 μL 稀释液 | 200 |
ST3 | 500 μL ST2 溶液 + 500 μL 稀释液 | 100 |
ST4 | 500 μL ST3 溶液 + 500 μL 稀释液 | 50 |
ST5 | 500 μL ST4 溶液 + 500 μL 稀释液 | 25 |
ST6 | 200 μL ST5 溶液 + 800 μL 稀释液 | 5 |
ST7** | 200 μL ST6 溶液 + 800 μL 稀释液 | 1 |
NCS(阴性对照) | 稀释液 | 0 |
* ST0 可于-65 ℃及以下稳定保存 15 天,请勿反复冻融。
** ST7 (1 pg/mL) 作为锚定点参与校准曲线的拟合,但在方法学验证中对其浓度 CV 及相对偏差不做要求。
l 样品:细胞培养上清等。应清澈透明,经离心或过滤等方式去除不溶物。
l 存放:样品务必事先有稳定性的研究,明确最佳的保存条件;一般建议样品长期储存应放置于-65 ℃以下环境中,且不宜反复冻融。
l 处理:预估待测样品中 Human IFN-γ所含的浓度,用稀释液稀释适当倍数,使其检测值落入标曲定量范围之中。
l 对初次使用或样品中 Human IFN-γ含量未知的情况,强烈建议进行样品适用性验证,确定适宜的样品稀释倍数,以便更好进行后续常规检测。相关验证方案可咨询我司技术支持。
1. 单通道移液器配合无菌滤芯吸头准确移取 100 μL 系列校准品溶液及稀释液(NCS)加入相应微孔板中,溶液加入孔底部,操作时避免产生气泡,每个浓度做 2-3 个平行复孔,并记录各浓度孔所在位置。
2. 将处理好的待测样品按同样操作加入相应微孔板中。加样后将微孔板用封板膜密封,放置于微孔板恒温振荡器上,室温条件下 500 rpm,振荡孵育 1 小时。(若没有配备微孔板恒温振荡器,可选择室温静置孵育 2 小时。)
表 4 96 孔酶标板加样排版示例
1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 | |
A | NCS | NCS | NCS | S1 | S1 | S1 | ||||||
B | ST7 | ST7 | ST7 | S2 | S2 | S2 | ||||||
C | ST6 | ST6 | ST6 | S3 | S3 | S3 | ||||||
D | ST5 | ST5 | ST5 | |||||||||
E | ST4 | ST4 | ST4 | S1+SRC | S1+SRC | S1+SRC | ||||||
F | ST3 | ST3 | ST3 | S2+SRC | S2+SRC | S2+SRC | ||||||
G | ST2 | ST2 | ST2 | S3+SRC | S3+SRC | S3+SRC | ||||||
H | ST1 | ST1 | ST1 |
² 该示例表示的是检测 7 个浓度梯度的校准曲线(ST1-ST7)、1 个阴性对照 NCS、3 个待测样品(S1-S3)和每个样品加标回收 SRC(S1 SRC-S3 SRC)。
² 实际检测时可根据样品多少,参照此示例进行 96 孔板排版加样。
² 客户可根据方法验证结果确定日常检测复孔数及是否设置加标回收。
1. 倒去反应液,用 1×缓冲液洗板,340 μL/孔,迅速甩掉液体,于纸巾上拍干。如此洗板 3 次。洗板后的微孔板应立即进行后续操作,不可放置,期间避免微孔板干燥。
2. 取 1×生物素偶联 Human IFN-γ抗体溶液倒入加样槽中,用多通道移液器配合无菌滤芯吸头快速将抗体溶液 100 μL/孔加入上述微孔板孔底部,勿引入气泡。封板膜密封后,于室温避光反应 45 分钟。
1. 将上述微孔板用 1×缓冲液,340 μL/孔,迅速甩掉液体,于纸巾上拍干。如此洗板 3 次,期间避免微孔板干燥。
2. 取 1×链霉亲和素 HRP 复合物溶液倒入加样槽中,用多通道移液器配合无菌滤芯吸头快速将溶液 100 μL/孔加入上述微孔板孔底部,勿引入气泡。封板膜密封后,于室温避光温育 15 分钟。
1. 提前 20 分钟将 TMB 显色液置于室温避光条件下平衡。
2. 将上述板子用 1×缓冲液,340 μL/孔,迅速甩掉液体,于纸巾上拍干。如此洗板 5 次,期间避免微孔板干燥。
3. 取合适体积的 TMB 显色液于加样槽中,用多通道移液器迅速将 TMB 显色液 100 μL/孔加入上述微孔板中,于室温避光温育 15 分钟。此步骤勿用封板膜密封。
1. 取合适体积的终止液于加样槽中,用多通道移液器迅速将终止液 50 μL/孔加入上述微孔板中,加入顺序需同显色液加入顺序一致,加样时吸头应悬空,避免接触微孔板中溶液,切勿产生气泡。
2. 室温避光静置孵育 5 分钟。
1. 设定酶标仪波长 450 nm 和 620-650 nm(620-650 nm 区间内单一长波长均可),测定各孔 OD 值。测定时不可覆盖封板膜或盖子。
备注:若酶标仪没有配备长波长时,可以省去此步骤。
1. 各孔 OD450 nm 数值需减去各自孔的长波长 OD 值。若酶标仪没有配备长波长时,可以省去此步骤。
2. 各校准点和样品的 OD 值分别减去阴性对照的 OD 值后,重复孔取均值。以校准点浓度值和 OD 值进行四参数拟合,获得校准曲线方程。将样品的平均 OD 值带入方程计算得到样品浓度,该浓度需乘以稀释倍数得到样品的实际浓度。
3. 标曲的拟合软件可以用酶标仪自带的软件。如无,则建议采用专业的标曲制作软件,如 Curve Expert,ELISA Calc 等。
1. 对于吸光度值超出校准品 ST1 的样品,可用稀释液稀释适宜倍数后再测定,样品中 Human IFN-γ 浓度值为稀释后测定值×稀释倍数。该稀释度下设置的适宜加标样品,其回收率符合相应法规的方法学验证要求。
1. 本品仅适用于研究用途,不用于诊断。
2. 样品 pH 应保证在 6.0-8.5 之间,过低或过高的 pH 可能会造成测量值异常。
1. 线性范围:5-400 pg/mL,线性相关系数 R2≥0.990。
2. LLOQ:5 pg/mL。
3. 典型校准曲线及其数据如下图:
表 5 典型校准曲线及数据
浓度(pg/mL) | OD450 nm-620 nm | 均值 |
方程: y = (A - D) / [1 + (x/C)^B] + D A = 8.44302 B = -1.01023 C = 1192.73656 D = 0.00183 R2 = 0.99994 |
2.1379 | |||
400 | 2.1037 | 2.1133 | |
2.0982 | |||
1.2186 | |||
200 | 1.2117 | 1.2110 | |
1.2028 | |||
0.6453 | |||
100 | 0.6427 | 0.6386 | |
0.6277 | |||
0.3519 | |||
50 | 0.3468 | 0.3466 | |
0.3411 | |||
0.1834 | |||
25 | 0.1808 | 0.1826 | |
0.1836 | |||
0.0441 | |||
5 | 0.0445 | 0.0450 | |
0.0463 | |||
0.016 | |||
1 | 0.0165 | 0.0162 | |
0.016 | |||
0.0097 | |||
0 | 0.0103 | 0.0102 | |
0.0105 |
4. 精密性:批内变异系数不高于 15%,批间变异系数不高于 20%。
5. 专属性:试剂盒可识别天然和重组的 Human IFN-γ。与下列细胞因子无交叉反应:
Recombinant human: IL-2, IL-6, IL-7, IL-10, IL-12, IFN-β, IFN-α2b, IFN-γ R1, IFN-γ R2;
Other recombinants: Rat IFN-γ, Mouse IFN-γ.
6. 校准:试剂盒由重组 Human IFN-γ进行校准,可溯源至 NIBSC 国际标准品(82/587)。
NIBSC (82/587) approximate value (IU/mL) = 0.0065×Human IFN-γ value (pg/mL)
试剂盒使用人员需经过培训,合格后方可使用。为了获得满意的检测结果,请您务必事先留意如下几点事项:
² 所有的试剂配制务必使用无菌一次性的吸头、试管和加样槽等,切勿混用。避免微量移液器吸头连接部分的污染,建议每次实验前后用 75%酒精擦拭。规范移液操作,严禁液体倒吸到移液器,或未去掉吸头时横放在桌上。
² 校准品和样品的稀释混匀要轻柔充分,勿产生大量泡沫。
² 终止液为酸性溶液,在使用中注意眼睛、面部、手和衣服的防护。
² 不同批次试剂盒不建议混用。
² 配制缓冲液所用水需为无菌水或新鲜制备的超纯水,水温不得超过 37 ℃。
² 加样时将样品加于酶标板底部,尽量不接触孔壁。注意不要有气泡,可轻轻晃动混匀。在上机检测前若有气泡存在,需用干净的 10 μL 吸头或针头等戳破,注意不要吸走孔内液体,导致结果误差大。
² 在孵育反应时需给酶标板覆膜,防止样品蒸发。
² 倒去缓冲液后应马上加后续溶液,勿让酶标孔处于干燥状态,以防影响试剂盒检测性能。
² 不用的酶标板条需用试剂盒附带的自封铝箔袋避光保存,以免被其他样品污染,导致试剂盒报废。
² 校准品配制、样品稀释等务必精确,配制时最小的取样量不要小于 5 μL,防止结果出现较大的误差。
² 生物素偶联 Human IFN-γ抗体(100×)和链霉亲和素 HRP 复合物(100×)请在使用前快速离心,将管盖中残留的试剂甩到管底,防止试剂的污染和损失。
² 已稀释到工作浓度的校准品、生物素偶联 Human IFN-γ抗体、链霉亲和素 HRP复合物等因无法保证其稳定性,不建议再次重复使用。
² 显色液应是无色透明液体。吸取时务必更换干净的吸头,防止 HRP 污染。如发现已有淡蓝色,请弃用。
² 确保加入终止液后 5 分钟再上机检测,结果更稳定,时间不超过 30 分钟。
² 由于叠氮钠能抑制 HRP 活性,对检测结果有很大影响,因此样品中不能添加叠氮钠。
若实验结果出现异常,请及时对未使用的酶标板和试剂进行妥善保管,对显色的酶标板实验结果拍照,保留实验原始数据。联系我司技术支持为您解决问题。以下常见的异常现象及解决方法供您参考:
问题描述 | 可能原因 | 解决方法 |
背景信号高 |
1. 稀释所用的水污染; 2. 配液所用移液器、吸头、离心管等耗材污染; 3. 操作环境不洁净; 4. 校准品稀释过程中造成污染; 5. 洗板操作不规范; 6. 洗板次数不够, 加液量不足,浸泡时间不足; 7. 试剂错配。 | 1. 使用无菌或新制备的超纯水稀释缓冲液; 2. 移液器应专用,并使用无菌带滤芯吸头; 3. 试验操作分区; 4. 校准品稀释操作应规范,瓶(管)口切勿触碰移液器外壁,造成管间交叉污染; 5. 手动洗板时移液器吸头应悬空,切勿触及管内液面; 6. 严格按照说明书推荐的加液量、洗板次数和浸泡时间,切勿随意更改; 7. 生物素偶联 Human IFN-γ抗体(100×)或 者链霉亲和素 HRP 复合物(100×)使用时正确稀释 100 倍。 |
读数后某些孔 OD 值异常偏高 |
1. 手动洗板过程中,甩液不迅速,或反复多次甩板,造成孔间液体飞溅交叉污染; 2. 手动洗板后,纸巾上拍干时操作不当或未更换新纸巾; 3. 加样操作不当; 4. 温育时未覆盖封板膜; 5. 揭开封板膜时操作不当,导致孔内液体飞溅。 | 1. 手动洗板时,甩液应一次完成,快速彻底; 2. 板子拍干用的纸巾是一次性用品,不得重复使用。在纸巾上拍干时,每拍一次更换一个新位置或新纸张,勿使拍痕重叠,若残留液体造成纸巾湿透,应弃去旧纸巾,重新铺就多层纸巾,每洗板一次拍干 4-5次为宜; 3. 加样应匀速加于微孔板孔底部,防止加在孔壁上缘,飞溅造成邻近孔污染; 4. 微孔板孵育时应覆盖封板膜防止液体蒸发和污染杂物; 5. 揭开封板膜时,将微孔板平放在水平桌面上,用一只手的拇指和食指紧紧压在板子两侧防止移动,另一只手从一个角开始匀速揭开封板膜,过程中要始终保持板子不离开桌面,防止孔内液体飞溅。 |
1、YY/T 1183-2010 酶联免疫吸附法检测试剂(盒)
2、FDA. Bioanalytical Method Validation
3、ICH M10:生物分析方法验证及样品分析
生效日期:2024 年 11 月 07 日
400-829-0116